Visualização de proteínas e docking molecular

Instrutor: Rafaela Ferreira 

Vagas: 30 totais

Observação: Cada aluno pode trazer o seu próprio computador 

Carga horária: 8h

Descrição: No minicurso, iremos discutir as bases da metodologia de docking molecular e suas aplicações, incluindo sucessos recentes como o desenvolvimento de fármacos para tratamento de COVID-19. O componente prático do curso envolverá a realização de cálculos de docking molecular e a visualização de proteínas e complexos proteína-ligante em programas de visualização gráfica.

Desenvolvimento de Teste Rápido Imunocromatográfico

Instrutores: Thiciany Lopes e Julia Sampaio

Vagas: 35 totais

Carga horária: 4h (20 de fevereiro)

Descrição: O minicurso teórico abordará os principais aspectos relacionados ao desenvolvimento de testes rápidos imunocromatográficos: definição e princípios dos diferentes formatos de testes disponíveis; componentes e equipamentos utilizados nas etapas de desenvolvimento; aplicabilidade da tecnologia; características necessárias para que o teste possa ser utilizado no diagnóstico de doenças; uma visão geral do processo de prototipagem.

Estudando proteínas e mutações por métodos computacionais

Instrutores: Lucas Bleicher, Millena Fernandes, Paulo Henrique Gomes, Eduardo Horta e Sarah de Souza

Vagas: 30 totais

Carga horária: 8h

Observação: Cada aluno pode trazer o seu próprio computador 

Descrição: O curso terá uma exposição teórica sobre estrutura e função de proteínas, seguida de parte prática em que os alunos aprenderão a obter informações úteis sobre proteínas e mutações com base em ferramentas que analisam sequências, estruturas e evolução molecular.

Minicurso Teórico-Prático: Impressão 3D de modelos moleculares

Ministrado por Prof. Dawidson Gomes e Dra. Michele Rodrigues

Vagas: 20 totais

Carga horária: 4h (21 de fevereiro)

Descrição: O minicurso de Impressão 3D de modelos moleculares terá como objetivo ensinar a teoria dos principais tipos de tecnologias de impressão 3D e como importar modelos moleculares para sua impressão. Durante o curso, mostraremos a impressora 3D e o seu funcionamento para a finalidade, na parte prática.

Imunofluorescência: princípios, preparação de amostra e aquisição de imagens

Instrutores: Clara Couto Fernandez e Samuel Rocha

Vagas: 35 totais

Carga Horária: 8h

Descrição: No minicurso, abordaremos os princípios envolvidos na técnica de imunofluorescência e as formas de obter as imagens. Utilizaremos como exemplos de preparo de amostras lâminas histológicas, culturas celulares fixadas e culturas celulares vivas. Ainda, explanaremos sobre a técnica de microscopia confocal para aquisição das imagens de imunofluorescência e o que é necessário para obtenção de uma imagem perfeita.

Introdução ao RStudio para análise de dados

Instrutores: Carlena Tahina Navas de Reyes, Gloria Maria Da Silva e Yala Sampaio

Vagas: 20 totais

Carga horária: 8h

Observação: Cada aluno pode trazer o seu próprio computador 

Descrição: O curso "Introdução ao R Studio para análise de dados" fornece uma base aberta para a utilização do R Studio, um poderoso ambiente de programação de código aberto, para análise de dados eficaz, útil para pesquisa em diferentes áreas da biologia molecular, bioquímica e imunologia.

A Magia do Luminex Multiplex - Do Ensaio a Análise de Dados

Instrutor: Lucas Haniel

Vagas: 20 totais

Carga Horária: 4h (20 de fevereiro)

Descrição: A técnica Luminex permite uma detecção mais ampla que um ELISA convencional, com uma gama maior de biomarcadores, permitindo maior sensibilidade na detecção de moléculas em uma amostra. No minicurso, o Doutorando Lucas Haniel, vai desvendar as nuances da experimentação e análise do Luminex Multiplex, trazendo exemplos e situações reais que permitiram ilustrar melhor os cenários que envolvem este ensaio.

Uso de modelos derivados de iPSCs como técnica para investigação do cérebro humano

Instrutores: Juliana Paiva e Pablo Leal Cardoso

Vagas: 20 totais

Carga Horária: 8h

Descrição: Neste minicurso, os alunos aprenderão uso da técnica de iPSC como ferramenta de investigação científica, que pode ser usada de forma aplicada em substituição a modelos animais. Além disso, teremos um módulo sobre técnicas de manipulação genérica, como CRISPR, com o intuito de apresentar aos alunos o uso de métodos de biologia molecular, que possui ampla aplicabilidade na área das Ciências Biológicas e da Vida, incluindo para a manipulação genética de iPSCs.

Engenharia genética: como manipular genes?

Instrutor: Clara Fernandez

Vagas: 35 totais

Carga Horária: 4h (20 de fevereiro)

Descrição: Neste minicurso, abordaremos as principais ferramentas da engenharia genética. Relembraremos os conceitos básicos da biologia molecular, como replicação do DNA e expressão gênica, aprenderemos sobre os métodos de clonagem, transformação, transfecção e vetores utilizados, assim como a diferença entre manipulação genética feita em célula procariótica e eucariótica. Também discutiremos as aplicações da engenharia genética, como os transgênicos.

O sistema CRISPR-Cas e suas aplicações

Instrutor: Hugo Itaru Sato

Vagas: 35 totais

Carga Horária: 4h (21 de fevereiro)

Descrição: Neste minicurso teórico, será abordado desde os princípios fundamentais até as aplicações práticas da tecnologia CRISPR-Cas. Além de temas como edição gênica e terapias genéticas, também será explorado o papel crucial do sistema CRISPR-Cas na detecção de DNA ou RNA, ampliando suas aplicações no diagnóstico molecular e detecção de patógenos.

Modelos experimentais para o estudo da resolução da inflamação

Instrutores: Fernanda de Lima Tana e Felipe Rocha da Silva Santos

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: A resolução bem-sucedida da inflamação requer a mudança da produção de moléculas pró-inflamatórias para moléculas pró-resolução e a eliminação de granulócitos e macrófagos. Os mediadores pró-resolução podem regular a inflamação e proteger contra lesões causadas por infecção. O objetivo deste minicurso é demonstrar as plataformas experimentais utilizada pelos pesquisadores do nosso Centro para a prospecção de moléculas com ação pró-resolutiva.

Princípios básicos da PCR

Instrutores: Lígia Duval e Juliana Edelvacy

Vagas: ESGOTADAS

Carga Horária: 8h

Descrição: O minicurso explorará tanto os fundamentos teóricos quanto práticos da técnica de Reação em Cadeia da Polimerase (PCR), destacando seus princípios, conceitos e diversas aplicações. O curso será dividido em três partes, cada uma abordando os seguintes temas: (1) a técnica e aplicação da PCR; (2) a prática da PCR convencional; e (3) a visualização de amplicons por meio de eletroforese em gel de agarose.

DNA e RNA: extração e análise

Instrutores: Giovanna Camatta e Felipe Caixeta

Vagas: ESGOTADAS

Carga Horária: 8h

Descrição: O minicurso abordará os princípios teóricos envolvidos no processo de extração de DNA e de RNA de amostras biológicas/ tecidos usando kits comerciais além das técnicas utilizadas para quantificação e análise de qualidade do material genético extraído. Além disso, este minicurso contará com a parte prática da extração e análise de qualidade e quantidade.

Modelos experimentais de alergia alimentar

Instrutor: Marcos Andrade de Oliveira

Vagas: ESGOTADAS

Carga Horária: 8h

Descrição: Nesse minicurso, iremos aprender sobre como modelos experimentais de alergia alimentar são criados. Iremos discutir sobre as inúmeras possibilidades de desenhar modelos, os parâmetros que determinam o sucesso do modelo, assim como seus prós e contras. Por fim, vamos abordar como usamos o método ELISA para a dosagem de IgE, o principal anticorpo relacionado às alergias alimentares.

Técnicas de cultura de células: avaliação da imunidade dos macrófagos

Instrutores: Luiz Pedro Souza Costa e Josiane Teixeira de Andrade Chaves

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: Neste minicurso, os alunos aprenderão as técnicas básicas para cultura de células, incluindo: esterilização de materiais; preparação de meio de cultura; uso da cabine de segurança biológica; isolamento de células de medula óssea e diferenciação em macrófagos; contagem de células e plaqueamento para estudos subsequentes; técnica de avaliação da citotoxicidade celular. O curso será totalmente prático e contará com a participação direta dos alunos.

Princípios básicos em cultura celular e imunofenotipagem por citometria de fluxo

Instrutores: Fábio Antônio Vitarelli Marinho e Nina Marí Gual Pimenta de Queiroz

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: O minicurso abordará o planejamento experimental e cultura celular de esplenócitos no primeiro dia e imunofenotipagem de células no segundo dia. O objetivo principal é que os alunos tenham uma ideia geral desde o planejamento do experimento, aquisição das amostras, cultura celular, análise por citometria e aquisição dos resultados.

Produção de proteínas recombinantes para uso em vacinas

Instrutor: Samille Henriques

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: O curso irá abordar as estratégias para obtenção de sistemas de expressão em modelo procarioto bem como algumas estratégias utilizadas para a produção de proteínas recombinantes em células eucariontes. O curso é voltado para alunos de graduação e pós-graduação das áreas biológicas com interesse de atuação em biotecnologia.

Ensaio de Western Blot

Instrutor: María José González Armijos e Thais Bassani

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: O curso tem como objetivo ensinar as técnicas de dosagem de proteínas pelo método Bradford, preparo de gel de acrilamida para eletroforese, transferência semi-seca das proteínas para a membrana PVDF e finalizando pela revelação das mesmas mediante o kit quimioluminescência.

Curso Teórico-Prático de Espectrometria de Massas

Instrutores: Pablo Victor Mendes dos Reis e Adriana Campezatto Raabe

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: A programação conta com palestras sobre conceitos básicos de espectrometria de massas, conceitos e aplicações de MALDI-TOF/TOF e LC/MS, preparo de amostras, aquisição e tratamento de dados.

Purificação de proteínas por métodos cromatográficos

Instrutores: Matheus Aragão, Marcel Arruda Diogo e Roger Ryuler

Vagas: ESGOTADAS

Carga horária: 8h

Descrição: Este minicurso foi criado para abordar as questões teóricas e práticas sobre purificação de proteínas pela técnica de cromatografia. Durante o curso, abordaremos os fundamentos da cromatografia, desmistificando os princípios que sustentam essa abordagem. Exploraremos diferentes tipos de cromatografia, destacando suas particularidades, como cromatografia de afinidade, troca iônica, por exclusão de tamanho e de interação hidrofóbica. No aspecto prático, discutiremos estratégias de planejamento experimental para garantir resultados eficazes e abordaremos desafios comuns enfrentados ao purificar proteínas, oferecendo soluções realistas.